果凍晶瑩剔透，口感 QQ 的，其實果凍的原料瓊脂糖，也是我們平時用來跑電泳的材料，瓊脂糖凝膠電泳實驗常用以 DNA 切膠回收，DNA 分離和用于佐證 DNA 是否重組、質(zhì)粒等是否切開。今天我們就來聊聊瓊脂糖凝膠電泳實驗的一些小技巧小細節(jié)。

第一步：膠液的制備 

稱取 0.4g 瓊脂糖，置于 200ml 錐形瓶中，加入 50ml 0.5×TBE 稀釋緩沖液，放入微波爐里加熱，直到瓊脂糖全部熔化，取出搖勻，此為 0.8%瓊脂糖凝膠液。總液體量不宜超過錐瓶的 50%容量。否則會溢出來的。還要擦洗微波爐。加熱過程中要不時搖動，使附于瓶壁上的瓊脂糖顆粒進入溶液。加熱時應蓋上封口膜，以減少水份蒸發(fā)。

第二步：膠板的制備 

倒膠時的溫度不可太低，否則凝固不均勻。東一塊西一塊的。果凍做出來就不好看啦。速度也不可太快，否則容易出現(xiàn)氣泡。果凍做出來里面都是氣泡。怎么吃呀？待膠*凝固后撥出梳子，注意不要損傷梳底部的凝膠。

第三步：加樣 

注意上樣時要小心操作，避免損壞凝膠或?qū)悠凡鄣撞磕z刺穿。果凍下面被戳個窟窿，還怎么吃呀？

第四步：電泳 

加完樣后，合上電泳槽蓋，立即接通電源?？刂齐妷罕３衷?60-80V，電流在 40mA 以上。當溴酚藍條帶移動到距凝膠前沿約 2cm 時，停止電泳。

第五步：染色 

未加 EB 的膠板在電泳完畢后移入 0.5μg/ml 的 EB 溶液中，室溫下染色 20-25 分鐘。

第六步：觀察和拍照 

在波長為 254nm 的長波長紫外燈下觀察染色后的或已加有 EB 的電泳膠板。DNA 存在處顯示 出肉眼可辨的桔紅色熒光條帶。紫光燈下觀察時應戴上防護眼鏡或有機玻璃面罩，以免損傷眼睛。

除這些細節(jié)之外，還有一些注意事項： 

1、酶切時所加的 DNA 溶液體積不能太大，否則 DNA 溶液中其他成分會干擾酶反應。 

2、酶活力通常用酶單位（U）表示，酶單位的定義是：在最適反應條件下，1 小時*降解 1 mg λDNA 的酶量為一個單位，但是許多實驗制備的 DNA 不象 λDNA 那樣易于降解，需適當增加酶的使用量。反應液中加入過量的酶是不合適的，除考慮成本外，酶液中的微量雜質(zhì) 可能干擾隨后的反應。 

3、市場銷售的酶一般濃度很大，為了省著點兒花，使用時可事先用酶反應緩沖液進行稀釋。 另外，酶通常保存在 50%的甘油中，實驗中，應將反應液中甘油濃度控制在 10%以下，否則，酶活性將受影響。 

4、觀察 DNA 離不開紫外透射儀，可是紫外光對 DNA 分子有切割作用。從膠上回收 DNA 時， 應盡量縮短光照時間并采用長波長紫外燈(300-360nm），以減少紫外光切割 DNA。

5、EB 是強誘變劑，還有中等毒性，就是有致癌性。配制和使用時都要戴好手套。盡量不要把 EB 灑到桌面或地面上。如果真的不幸灑到桌面或地面上了，凡是沾污了 EB 的容器或物品必須經(jīng)專門處理后才能清洗或丟棄。

6、當 EB 放太多了，膠染色過深，DNA 帶看不清的時候，可將膠放入蒸餾水沖泡，30 分鐘后再觀察。 

以上，安培君介紹了做果凍，啊，不！做瓊脂糖凝膠電泳實驗的一些小技巧小竅門，也希望大家伙兒做出好吃的“果凍"來。